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大豆質(zhì)核互作雄性不育系花器官發(fā)育生理生化特性的變化

來源:期刊VIP網(wǎng)所屬分類:農(nóng)業(yè)科技時間:瀏覽:

  摘要:以大豆質(zhì)核互作雄性不育系JLCMS9A及其同型保持系JLCMS9B為試驗材料,測定花芽期、花蕾期、成花期中超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)的活性以及丙二醛(MDA)、淀粉、可溶性蛋白、可溶性糖、游離脯氨酸的含量,分析3個時期生長素(IAA)、赤霉素(GA3)、異戊烯基腺嘌呤核苷(iPA)、脫落酸(ABA)的含量及變化。結(jié)果表明,在花芽期不育系中的SOD、CAT活性以及MDA、游離脯氨酸的含量均高于保持系,而在花蕾期和成花期相反,其值均低于保持系;不育系的POD活性在花芽期顯著低于保持系,在花蕾期和成花期相反,其值均高于保持系;不育系9A的淀粉、可溶性糖含量整體呈上升趨勢,在花蕾期和成花期均低于保持系9B。花器官整個發(fā)育過程中,不育系9A的IAA含量呈先升后降的變化趨勢,iPA含量為逐漸升高趨勢,不育系各激素含量均低于保持系。不育系的IAA/ABA、IAA/GA3、IAA/iPA、ABA/GA3的比值與保持系存在差異。由此推斷,花器官發(fā)育生理特性的異常與大豆質(zhì)核互作雄性不育有關(guān),花蕾期可能是大豆質(zhì)核互作雄性不育系花器官生理生化指標發(fā)生異常的關(guān)鍵時期。

  關(guān)鍵詞:大豆;質(zhì)核互作雄性不育;花器官;生理生化特性;抗氧化酶活性;內(nèi)源激素含量

  大豆原產(chǎn)于我國,迄今已有5 000多年的栽培史,因此我國有豐富的大豆資源。大豆作為主要糧食作物之一,是人類所需蛋白質(zhì)和食用植物油的主要來源。隨著我國經(jīng)濟的發(fā)展,各方面對大豆的需求也日益增加。但由于大豆的產(chǎn)量和經(jīng)濟效益較低,導致其種植面積低于玉米、水稻、小麥等主要糧食作物,我國大豆總產(chǎn)量明顯供不應求。因此培育高產(chǎn)、優(yōu)質(zhì)、抗性強的大豆是我國大豆育種的首要目標,而實現(xiàn)這一目標最有效的措施就是利用雜種優(yōu)勢。大豆質(zhì)核互作雄性不育系的發(fā)現(xiàn)為大豆雜種優(yōu)勢的利用提供了基礎[1]。

  近年來,對于棉花[2]、水稻[3]、油菜[4]、煙草[5]、白菜[6-8]、玉米[9]等生理生化特性的研究較多,而關(guān)于大豆不育系及其生理生化特性的研究卻鮮有報道。研究者們發(fā)現(xiàn)植物雄性不育與其器官的物質(zhì)代謝、能量代謝、內(nèi)源激素以及其抗氧化酶活性有關(guān)。雄性不育系體內(nèi)的物質(zhì)含量減少,代謝速度降低。研究指出抗氧化酶[超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)]具有清除植物代謝過程中產(chǎn)生的氧自由基的作用,可以保持質(zhì)膜的穩(wěn)定性[10],從而維持植物體內(nèi)活性氧的平衡。內(nèi)源激素與植物的不育性有關(guān),是調(diào)節(jié)其生長發(fā)育的重要因子[11-12]。

  我國大豆雄性不育的主要類型有細胞核雄性不育[13-15]、質(zhì)核互作雄性不育[16-18]和光溫敏雄性不育3種[19-21]。本試驗以大豆質(zhì)核互作雄性不育系及其同型保持系作為試驗材料,通過測定花器官發(fā)育不同時期中的SOD、POD、CAT活性,丙二醛(MDA)、淀粉、可溶性蛋白、可溶性糖、游離脯氨酸的含量以及生長素(IAA)、赤霉素(GA3)、異戊烯基腺嘌呤核苷(iPA)、脫落酸(ABA)等內(nèi)源激素含量及其動態(tài)含量的變化,探究其與不育性的相關(guān)性,以期為選育大豆優(yōu)良不育系及不育機制研究提供理論依據(jù)。

  1 材料與方法

  1.1 試驗材料

  以吉林省農(nóng)業(yè)科學院大豆研究所提供的大豆不育系JLCMS9A與同型保持系JLCMS9B為試驗材料,下文分別用9A、9B表示。于2019年5月播種于內(nèi)蒙古民族大學北區(qū)試驗地,試驗設為3個小區(qū),每個小區(qū)的面積為20 m2,采用等行距相間種植,株行距為15 cm×60 cm,每個小區(qū)種植6行。試驗材料均在同一時期進行播種,且在生長期間采用相同的管理措施進行田間管理。

  1.2 樣品采集

  于盛花期開始取樣,對主莖第4節(jié)位以上的花芽、花蕾、成花分別進行取樣,重復3次,將樣品放入液氮進行速凍,然后放入-80 ℃冰箱保存。

  1.3 測定項目與方法

  可溶性蛋白含量采用考馬斯亮藍G-250染色法測定,可溶性糖及淀粉含量采用硫酸蒽酮比色法測定,游離脯氨酸含量采用酸性茚三酮法測定,CAT活性采用紫外吸收法測定,SOD活性采用氮藍四唑(NBT)光還原法測定,POD活性采用愈創(chuàng)木酚法測定,MDA含量采用硫代巴比妥酸(TBA)法測定。

  采用間接酶聯(lián)免疫(ELISA)法分別測定不育系及同型保持系花器官不同發(fā)育時期生長素(IAA)、赤霉素(GA3)、異戊烯基腺嘌呤核苷(iPA)和脫落酸(ABA)的含量,3次重復。

  1.4 數(shù)據(jù)分析

  利用軟件DPS 16.05對測定指標數(shù)據(jù)間的差異顯著性進行分析,使用Excel 2016進行柱狀圖繪制。

  2 結(jié)果與分析

  2.1 花器官發(fā)育不同時期抗氧化酶活性的變化

  如圖1所示,在花器官發(fā)育過程中,不育系9A的SOD活性呈下降趨勢,且在成花期達到顯著性差異;保持系9B的SOD活性則是先升高后降低,且花蕾期達到最高值(254.58 U/g),達到顯著性差異。在花蕾期、成花期,保持系9B的SOD活性分別是不育系9A的1.18、1.58倍,均達到顯著性差異。在成花期,不育系9A的SOD活性驟降,推測成花期可能是發(fā)生敗育的時期。

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