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高通量農(nóng)業(yè)基因工程技術(shù)VIGS的應(yīng)用研究

來源:期刊VIP網(wǎng)所屬分類:農(nóng)業(yè)科技時(shí)間:瀏覽:

  摘要:農(nóng)作物新品種的培育過程中,常常涉及到生物基因工程技術(shù)的使用,比如轉(zhuǎn)基因作物新品種、分子設(shè)計(jì)育種、基因編輯育種等。VIGS技術(shù)是農(nóng)業(yè)生產(chǎn)應(yīng)用中一種反向遺傳學(xué)的基因工程技術(shù),它一般根據(jù)具體育種目標(biāo),構(gòu)建精準(zhǔn)的基因沉默病毒載體,最終結(jié)合育種實(shí)踐培育出符合預(yù)期的農(nóng)作物新品種。該文研究了一種高通量的農(nóng)業(yè)基因工程技術(shù)VIGS在農(nóng)作物育種中的基因篩選應(yīng)用。

  關(guān)鍵詞:VIGS(基因沉默);高通量;農(nóng)業(yè)基因工程;技術(shù)應(yīng)用

農(nóng)業(yè)論文發(fā)表

  1 VIGS技術(shù)簡(jiǎn)介

  由于農(nóng)作物突變體的收集獲得較難,病毒誘導(dǎo)的基因沉默(Virus-induced gene silencing,VIGS)技術(shù)已經(jīng)成為一種有效的研究功能基因組學(xué)的反向遺傳學(xué)工具,而且VIGS是農(nóng)作物基因組功能分析的重要基因工程技術(shù)手段。VIGS一般是在已改造、優(yōu)化的病毒載體中,插入適當(dāng)大小的目的基因cDNA片段,隨著病毒侵染寄主并在農(nóng)作物組織中大量繁殖后,病毒載體中的目的cDNA片段在農(nóng)作物體內(nèi)利用siRNA的生物合成途徑產(chǎn)生針對(duì)靶標(biāo)基因的多種siRNA,繼而通過siRNA干涉機(jī)制,降解靶標(biāo)基因的mRNA,最終實(shí)現(xiàn)對(duì)目的基因轉(zhuǎn)錄水平的沉默或翻譯水平的抑制[1]。農(nóng)作物VIGS的基本過程包含以下幾個(gè)方面:1)病毒載體(已插入被沉默目的基因cDNA片段)的構(gòu)建;2)寄主農(nóng)作物的病毒侵染(如穿刺法、注射法、高壓法和真空滲透法等);3)寄主農(nóng)作物天然VIGS防御體系針對(duì)入侵病毒,產(chǎn)生sRNA并啟動(dòng)sRNA對(duì)目的基因的干涉機(jī)制[2]。

  2 VIGS技術(shù)在農(nóng)業(yè)基因工程應(yīng)用中的優(yōu)勢(shì)

  相比較其他可導(dǎo)致目標(biāo)基因沉默或功能抑制的技術(shù)方法,VIGS技術(shù)在農(nóng)業(yè)基因工程的實(shí)際應(yīng)用中,具有以下6個(gè)方面的優(yōu)勢(shì):1)快速簡(jiǎn)單、操作方便、實(shí)驗(yàn)周期短;(2)不需要繁瑣且周期長(zhǎng)的遺傳轉(zhuǎn)化,當(dāng)代就能觀察農(nóng)作物目標(biāo)基因沉默的表型及進(jìn)一步的分子鑒定;3)只需利用目標(biāo)基因的一段cDNA片段就能將該目標(biāo)基因沉默,無需知道基因的完整編碼序列;4)對(duì)同源性較高的一類基因家族成員,可選擇高度保守的區(qū)域用以沉默整個(gè)家族成員,也可以選擇非保守區(qū)域用以沉默其中某個(gè)家族成員;5)由于有些農(nóng)作物育種突變體的收集獲得較難,而且對(duì)于某些沉默致死或不育的基因,也可以利用VIGS的方法來實(shí)現(xiàn)對(duì)這類基因的功能分析;6)瞬時(shí)VIGS技術(shù)可用于高通量地篩選分析基因的功能以及可在不同農(nóng)作物種間完成比較基因?qū)W的快速研究[3]。由此可見,VIGS技術(shù)具備了上述實(shí)驗(yàn)方法和操作上的優(yōu)勢(shì),使其成為一種有效地篩選農(nóng)作物優(yōu)質(zhì)育種基因、研究農(nóng)作物新基因功能的反向遺傳學(xué)工具。

  3 高通量VIGS技術(shù)在農(nóng)作物基因功能檢測(cè)中的應(yīng)用

  本研究以八氫番茄紅素脫氫酶(PDS)基因?yàn)檠芯繉?duì)象,該基因的沉默可導(dǎo)致植物葉片及莖桿組織失綠,即光漂白表型。因此,在實(shí)施瞬時(shí)基因沉默實(shí)驗(yàn)時(shí),往往以PDS基因作為標(biāo)志性基因或陽性對(duì)照。此外,我們利用Web MicroRNA Designer 3平臺(tái)設(shè)計(jì)沉默麥類作物PDS基因的amiRNAs_PDS,WMD3網(wǎng)絡(luò)工具由Weigel創(chuàng)建,以便于設(shè)計(jì)、選擇適當(dāng)?shù)腶miRNA序列,并且提供了AtmiR319和OsmiR528等常用miRNA前體相關(guān)的引物,使amiRNA的構(gòu)建更加快捷。

  本研究建立了基于BSMV的vamiRNAs表達(dá)系統(tǒng),我們選擇了單、雙子葉植物不同的miRNA前體為骨架以表達(dá)這些vamiRNA_PDS,探索amiRNA的設(shè)計(jì)和選擇標(biāo)準(zhǔn)。另外,以單、雙子葉植物不同的miRNA前體為骨架,攜帶可誘導(dǎo)葉片產(chǎn)生光漂白表型的vamiRNA_PDS,比較分析同源或異源的不同miRNA前體在麥類作物中表達(dá)vamiRNAs的情況。實(shí)驗(yàn)采用來源不同的5個(gè)miRNA前體,他們分別是OsaMIR528,AthMIR319a,TaeMIR171a,HvuMIR168和HvuMIR171前體,其中OsaMIR528和AthMIR319a前體相對(duì)于小麥而言是外源miRNA前體,而且AthMIR319a前體相對(duì)于小麥來說又是雙子葉植物的miRNA前體,其他前體均屬于單子葉植物自大麥或小麥內(nèi)源的miRNA前體。

  以BSMV表達(dá)vamiR_TaPDS為例,利用End-point Stem-loop RT-PCR技術(shù)檢測(cè)不同miRNA前體表達(dá)vamiR_TaPDS的相對(duì)轉(zhuǎn)錄水平,圖1-A是該技術(shù)原理的示意圖。如圖1-C所示,半定量RT-PCR利用Stem-loop引物分別擴(kuò)增vamiRNA 23、26和29循環(huán)后,可檢測(cè)到不同miRNA前體在小麥葉片中均可切割產(chǎn)生vamiRNA。結(jié)合Real-time RT PCR(圖1-B),檢測(cè)不同miRNA前體在小麥中的切割效率,發(fā)現(xiàn)OsaMIR528前體可表達(dá)出較多的vamiRNA。另外,來源單、雙子葉植物不同的miRNA前體均可誘導(dǎo)小麥葉片光漂白表型(圖1-D)。

  因此,BSMV病毒載體攜帶內(nèi)源miRNA前體,可以在普通小麥中表達(dá)vamiRNA,即“與amiRNA序列相同的sRNA”;并且OsaMIR528前體相對(duì)本實(shí)驗(yàn)其他miRNA前體,表達(dá)vamiRNA的效率更高。可見,利用BSMV病毒載體的VIGS技術(shù),可以高通量沉默目標(biāo)基因,檢測(cè)目標(biāo)基因的功能,這就為農(nóng)業(yè)實(shí)際育種過程中,高通量篩選目標(biāo)基因提供了瞬時(shí)、快速和便利技術(shù)手段。

  4 結(jié)語

  與發(fā)達(dá)國(guó)家相比,中國(guó)農(nóng)業(yè)育種技術(shù)還有差距,需要我們創(chuàng)新育種理念,補(bǔ)上短板,突破傳統(tǒng)育種技術(shù)的限制,走出多種基因工程育種技術(shù)的新路,為保障中國(guó)糧食安全提供核心倡議支撐。當(dāng)前基因工程育種技術(shù)的重點(diǎn)在于解析復(fù)雜性狀分子調(diào)控網(wǎng)絡(luò),闡明其相互效應(yīng),構(gòu)建具有育種價(jià)值的分子模塊系統(tǒng),建立模塊耦合組裝的理論和應(yīng)用模型,實(shí)現(xiàn)高產(chǎn)、穩(wěn)產(chǎn)、優(yōu)質(zhì)、高效多模塊的有效組裝,創(chuàng)建新一代超級(jí)品種培育的系統(tǒng)解決方案和育種新技術(shù)。

  目前,先進(jìn)的表達(dá)小分子RNA的VIGS技術(shù),可以用于農(nóng)作物新品種目標(biāo)基因的高通量沉默和篩選,該項(xiàng)技術(shù)具有瞬時(shí)性、便捷性、快速性和高通量等優(yōu)點(diǎn)[4]。本研究通過利用BSMV病毒載體,在麥類作物中表達(dá)了vamiRNA,建立了基于BSMV病毒載體的sRNA表達(dá)系統(tǒng),為篩選育種目標(biāo)基因和研究麥類作物靶標(biāo)基因的功能提供了反向遺傳學(xué)方法。

  參考文獻(xiàn):

  [1]Jiao,J.;Wang,Y.C.;Selvaraj,S.N.;Xing,F(xiàn).G.;Liu,Y.Barley stripe mosaic virus (BSMV)induced microRNA silencing in common wheat(Triticum aestivum L.).PLoS ONE 2015, 10,e0126621.

  [2]Tang,Y.;Wang,F(xiàn).;Zhao,J.;Xie,K.;Hong,Y.;Liu,Y.L.Virus-based microRNA expression for gene functional analysis in plants.Plant Physiol.2010,153,632–641.

  [3]Sha A,Zhao J,Yin K,Tang Y,Wang Y,Wei X,et al.Virus-based microRNA silencing in plants.Plant Physiol.2014;164:36–47.

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